材料與儀器

RNA 樣品
乙酸銨 亞甲藍(lán)溶液 浸潤液 SSC 轉(zhuǎn)移緩沖液
印跡濾紙 交聯(lián)設(shè)備 玻璃皿 尼龍膜 有機玻璃或玻璃板 裁紙刀片 厚印跡濾紙 可見光盒 重物 黃色濾光片

步驟

一、材料

1. 緩沖液及溶液

含 0.5 μg/ml 溴化乙錠的 0.1 mol/L 乙酸銨

亞甲藍(lán)溶液（0.02% 亞甲藍(lán)（Sigma，89% 純度）溶于 0.3 mol/L 乙酸鈉（pH 5.5) ）

浸潤液

含 1% SDS (m/V) 的 0.2XSSC

20X SSC

轉(zhuǎn)移緩沖液

2. 核酸和核糖體

RNA 樣品，瓊脂糖電泳分離

3. 專用設(shè)備

印跡濾紙（Schleicher 和 Schuell GB002 或 Sigma P 9039)

交聯(lián)設(shè)備（如：Stratalinker, Stratagene; GS Gene Linker, Bio-Rad)或微波爐或真空爐

烤干的玻璃皿

帶正電荷或不帶電荷的尼龍膜

轉(zhuǎn)移過程中用于支持膠的有機玻璃或玻璃板

裁紙刀片

厚印跡濾紙（Whatman 3 MM/L, Schleicher 和 Schuell GB004, 或 Sigma Quick-Daaaraw)

可見光盒

400 g 的重物

照相用黃色濾光片

二、方法

轉(zhuǎn)移膠的制備

1. （可選）將膠浸入相應(yīng)的浸泡液中，部分水解經(jīng)瓊脂糖分離的 RNA 樣品的操作如下。將電泳后的膠經(jīng) NaOH 部分水解可提高 RNA 轉(zhuǎn)移至帶正電荷或不帶電荷的尼龍膜的轉(zhuǎn)移效率，該處理方法尤其適于瓊脂糖濃度>1%、凝膠厚度>0.5 cm 或待分析的 RNA>2.5kb 的情祝。

(1) 若轉(zhuǎn)移至不帶電荷的尼龍膜

① 用 DEPC 處理的水淋洗膠

② 將膠浸入 5 倍膠體積的 0.05 mol/L NaOH 中 20 min

③ 將膠轉(zhuǎn)入 10 倍體積的 20x SSC 中 40 min

④ 直接進(jìn)入步驟 2，迅速將部分水解的 RNA 通過毛細(xì)管轉(zhuǎn)移到不帶電荷的尼龍膜

(2) 若轉(zhuǎn)移至帶電荷的尼龍膜

① 用 DEPC 處理的水淋洗膠

② 將膠浸入 5 倍體積的 0.01 mol/L NaOH-3 mol/L NaCl 中 20 min

③ 直接進(jìn)入步驟 2，迅速將部分水解的 RNA 通過毛細(xì)管轉(zhuǎn)移到帶正電荷的尼龍膜

2. 將凝膠轉(zhuǎn)移至一個玻璃干烤皿內(nèi)，用鋒利的刀片修去凝膠的無用部分以保證轉(zhuǎn)移過程中膠與膜對齊，在凝膠的左上角切取一角以作為下列操作過程中凝膠方位的標(biāo)記。

3. 用長和寬均大于凝膠的一塊 Plexiglas 或玻璃板作為平臺，將其放入大干烤皿內(nèi)，上面放一張濾紙。

4. 于干烤皿內(nèi)倒入相應(yīng)的轉(zhuǎn)移緩沖液（帶正電荷的膜用 0.01 moI/L NaOH-3 mol/L NaCl，不帶電荷的膜用 20X SSC) 直至液面略低于平臺表面，當(dāng)平臺上方的濾紙*濕透后，用玻棒或移液管趕走所有的氣泡。

轉(zhuǎn)移膜的準(zhǔn)備

5. 用新的解剖刀或切紙刀裁一張長寬均大于膠 1 mm 的尼龍膜。

6. 將尼龍膜漂浮在去離子水表面直至濾膜從下往上全部濕透，然后將膜浸入 10X SSC 中至少 5 min，用干凈的解剖刀片切去濾膜一角，使其與凝膠的切角相對應(yīng)。

轉(zhuǎn)移系統(tǒng)的安裝和 RNA 的轉(zhuǎn)移

7. 將膠倒轉(zhuǎn)后置于平臺上濾紙的中央，確保厚濾紙和膠之間沒有氣泡滯留。

8. 用 Saran 保鮮膜或 Parafilm 膜圍繞凝膠周邊，而不是覆蓋凝膠。

9. 用轉(zhuǎn)移緩沖液浸濕膠（見第 4 步），在凝膠上方放置濕潤的尼龍膜，并使兩者的切角相重疊，濾膜的一條邊緣應(yīng)剛好超過凝膠上部加樣孔一線的邊緣。

10. 用相應(yīng)的轉(zhuǎn)移緩沖液浸濕兩張與膠大小一致的濾紙，放于濕的尼龍膜上，用玻棒趕走所有的氣泡。

11. 剪一疊 5~8 cm 厚，略小于濾紙的紙巾，放于濾紙上，于紙巾上放一塊玻璃板，然后壓上 400 g 重的重物。

12. 上行流路的 RNA 轉(zhuǎn)移在中性轉(zhuǎn)移緩沖液中的轉(zhuǎn)移時間不超過 4 h, 在堿性轉(zhuǎn)移緩沖液中不超過 1 h。

13. 拆除毛細(xì)管轉(zhuǎn)移系統(tǒng)，用圓珠筆在膜上標(biāo)出凝膠加樣孔的位置，將膜轉(zhuǎn)移至含 300 ml 6X SSC 的玻璃平皿中，然后將平皿放置搖床，室溫 23℃ 輕搖 5 min。

14. 從 6X SSC 溶液中取出凝膠，將多余的液體瀝干后，將膜的 RNA 面向上放置于干的濾紙上數(shù)分鐘。

RNA 的染色以及 RNA 在膜上的固定

染色和固定的步驟根據(jù)轉(zhuǎn)移類型、膜的類型以及固定方法不同而有所不同。由于在堿性緩沖液中 RNA 與帶正電的尼龍膜共價結(jié)合，故在染色前勿需將 RNA 固定在膜上，而在中性緩沖液中轉(zhuǎn)移至不帶電荷的尼龍膜上的 RNA，經(jīng)過染色后，可通過真空干烤 或在微波爐加熱而固定在膜上。若 RNA 通過紫外照射下交聯(lián)至膜上，則 RNA 的染色應(yīng)在固定之后。

轉(zhuǎn)移至尼龍膜的 RNA 可通過與亞甲藍(lán)染色得以鑒定（Herrin and Schmidt 1988), 這一簡單方法可用于 RNA 濃度監(jiān)測、轉(zhuǎn)移效率的估計、主要 RNA (通常是 rRNA) 在膜上位置的估計。如果 RNA 是通過紫外交聯(lián)固定，則轉(zhuǎn)至步驟 16。

15. 膜的染色。

(1) 將濕膜轉(zhuǎn)移至含亞甲藍(lán)溶液的玻璃器皿中染色，染色時間視能鑒定 rRNA 而定 ( 3~5 min)。

(2) 在可見光下用黃色濾光片對染色的膜照像。

(3) 照像后，將膜放入 0.2X SSC 和 1%（m/V）SDS 中室溫脫色 15 min。

16. RNA 固定在不帶電荷的尼龍膜上。

(1) 干燥固定

① 待膜在空氣中晾干后，將干燥的膜夾在兩張濾紙間，80℃ 真空爐干烤 2 h。

② 或?qū)衲ぶ糜诟傻臑V紙上，微波爐里（750~900 W) 以最大功率加熱 2~3 min。

(2) 紫外照射交聯(lián)固定

① 將濕潤的未染色的尼龍膜置于一張干的濾紙上，在波長 254 nm 處按照 1.5 J/cm2 的劑量照射 1 min 45s。

② 紫外照射后，參照步驟 15 用亞甲藍(lán)染色。

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